ATP 酶測定試劑盒（測普通組織勻漿） 生化試劑 返回列表頁

ATP 酶測定試劑盒（測普通組織勻漿）

(貨號：A016-2 不高速可測 Na +k +、Ca 2+Mg 2+、Ca 2+、Mg 2+-ATPase)

此試劑盒可測不需要高速離心的紅細胞膜以及不需要高速離心的組織勻漿中的 ATP 酶。

一、試劑組成與配制(50 管/48 樣 A016-2-1)：

試劑一：液體 10mL×3 瓶，4℃保存 6 個月。

試劑二：液體 10mL×1 瓶，4℃保存 6 個月。

試劑三：液體 10mL×1 瓶，4℃保存 6 個月。

試劑四：粉劑×3 支，-20℃以下保存 6 個月。用時每支

加雙蒸水 5mL，現用現配。余下的-20℃以下可

保存一周。

試劑五：粉劑×1 支，

4℃保存 6 個月。用時加雙蒸水 5mL，

適當加熱溶解，4℃保存 3 個月。

試劑六：粉劑×1 支，4℃保存 6 個月。用時加雙蒸水

10mL[注 1]，充分加熱使其溶解，室溫保

存。

試劑七：液體 10mL×2 瓶，室溫保存 6 個月。

試劑八：粉劑×3 瓶，

4℃保存 6 個月。用時每瓶加水 40mL

溶解。(溶解后避光 4℃可保存一周)。

試劑九：粉劑×1 瓶，4℃保存 6 個月。用時加水 100mL

溶解，室溫保存 3 個月。

試劑十：2.5mol/L 硫酸 100mL×1 瓶，室溫保存 6 個月。

試劑十一：10mmol/L 標準磷貯備液 10mL×1 瓶，4℃保

存 6 個月。0.5μmol/mL 標準磷應用液配制：用

時將貯備液 20 倍稀釋，即取 0.5mL 加蒸餾水

定容至 10mL。

定磷劑的配制：按雙蒸水: 2.5mol/L 硫酸:試劑八:試劑九

=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷劑應為淺黃

色，若無色則試劑失效，若是藍色則為磷污染，

定磷劑現用現配。

[注 1]：試劑六為過飽和溶液，所以在配制時用

90℃～100℃的熱蒸餾水 10.3mL(熱脹冷縮)邊

隔水加熱邊用玻璃棒攪拌，以使其充分溶解。

一次實驗用不完再用時可能有結晶，用之前可

以再次邊隔水加熱邊玻璃棒攪拌使其溶解。

[注 2]： 配試劑用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器，

也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。

四、如果您的樣本很多可以采用簡便操作法：

測試前 A、B、C、D、E 五種混合試劑的配制：

根據規范操作表中 A、B、C、D、E 各管的試劑量

乘以您所需要測試的樣本數(n)再放寬 1～2 只的量(避

免吸到最后試劑量不夠)，然后縱向混合。 

六、測定意義：

ATP 酶存在于組織細胞及細胞器的膜上，是生物膜

上的一種蛋白酶，它在物質運送、能量轉換以及信息傳

遞方面具有重要的作用。

七、測定原理：

ATP 酶可分解 ATP 生成 ADP 及無機磷，測定無機磷的

量可判斷 ATP 酶活力的高低。

八、注意點：

1、此法具有微量、靈敏、快速的特點。所以對測定所用試

管要求嚴格，要沒有一點磷，若試管放過磷酸或磷酸鹽

緩沖液，一定要洗得非常干凈，要先用洗潔精加水煮，

再用自來水沖，最后用蒸餾水沖干凈。用一次性塑

料管或新玻璃管，避免磷污染是檢測成敗的關鍵。

2、定磷劑配好后，不可放置太久，一般保存一天，現

用現配。隨時放冰箱。

3、采用先配 A、B、C、D、E 五種混合液中的幾種，

然后按簡化操作步驟進行檢測。這樣快捷、準確。

4、所有配試劑的器皿均要專用，包括吸硫酸的吸管及盛水

的器皿，用新的。

5、本研究所有加厚的一次性塑料試管供應，請在訂購試劑

的同時訂購一次性塑料試管。

附錄Ⅰ：樣本前處理

一、樣本前處理：

1、全血的前處理：

①、紅細胞計數(詳見附錄Ⅱ)或血紅蛋白測定。兩者

只需測其中一樣。

②、洗滌紅細胞：取肝素抗凝全血 1mL，(若血樣較

少，則可以按一定比例減少血樣及各試劑的用

量。)加 4 倍左右的生理鹽水(0.86%NaCL 液)，

輕輕混勻，

1000～1500 轉/分，離心 5～10 分鐘，

棄上清留沉淀的紅細胞。

③、制備溶血液：在上述沉淀的紅細胞中加入 1.5mL

雙蒸水，將試管放在旋渦混勻器上混勻 30 秒，

放置 15 分鐘。再混勻 30 秒，再放置 15 分鐘，

使其充分溶血，直至溶液透亮。糖尿病大鼠的

紅細胞是不可以冰凍，否則越凍越不溶血。

④、取溶血液按操作表進行 ATP 酶檢測和血紅蛋白

測定。

2、組織的前處理：準確稱取組織重量按重量(g):體積

(mL)=1:9 的比例加入 9 倍體積的生理鹽水，冰

水浴條件下，機械勻漿，制備成 10%的勻漿液，

2500 轉/分離心 10 分鐘，取上清 0.2mL加 0.8mL

生理鹽水稀釋成 2%的勻漿待測。(取得的上清

液同時測一下相應樣本的蛋白濃度，總蛋白測

定試劑盒，本所有售，推薦 A045-2，考馬斯亮

蘭法)

3、培養細胞的前處理：將培養細胞消化，離心，棄上

清，留下層細胞，用生理鹽水或勻漿介質制備

成 10 7 /cm3的懸液，即 10 7 /mL 的懸液，再進行

破碎。破碎細胞的方法有三種：①、用勻漿器

勻漿。(可以用勻漿機，也可以用玻璃勻漿器手

工勻漿。)②、用進口的超聲粉碎器粉碎。③、

反復凍溶 3 次。(第③種方法有時會影響酶活

力。)制備好的勻漿液不需要離心，在測試加樣

前要搖勻后取樣。(破碎好的勻漿液同時測一下

相應樣本的蛋白濃度，總蛋白測定試劑盒，本

所有售，推薦 A045-4，BCA 法)

二、參考取樣量：

溶血液一般取 200μL，2%組織勻漿一般取 200μL，

細胞懸液一般取 200～300μL。如果您的樣本量很少，請

用超微量 ATP 酶檢測方法。

附錄Ⅱ：紅細胞計數法

紅細胞計數有以下三種方法，只需取其中一種即可以。

(我所有制備好的曲線供您參考。)

1、計數板直接紅細胞計數：

①、紅細胞稀釋液的配制：檸檬酸三鈉 3.8 克，甲醛 1mL，

蒸餾水 100mL，混勻，4℃保存。

②、取 1 支試管，加入紅細胞稀釋液 2mL，取抗凝全血

10µL 加入試管稀釋液中，反復吹吸數次，再將試管

顛倒數次混勻。

③、取一滴稀釋血液灌入計數板。(應一次灌滿，而且不

要灌得太多。)

④、用高倍鏡計數左上、左下、右上、右下，中央 5 個中

方格的紅細胞數，將數得的數字×10 10，即為每升血

中的紅細胞數。

2、光電比濁法計紅細胞數：

取試管 1 支，加入上述紅細胞稀釋液 4mL，再取 20µL

抗凝全血，加入 4mL 稀釋液中，反復吹吸數次，再將試

管顛倒數次混勻，立即倒入比色杯中，于 540nm，1cm 光

徑，蒸餾水調零進行比色，記下吸光度值。以計數板計數

的紅細胞的數值為橫坐標，以相應管的吸光度值為縱坐

標，作標準曲線。您可以不做曲線，用附錄Ⅲ的參考標

準曲線圖二(鼠紅細胞數與比濁法吸光度換算曲線)。根據

標準曲線查出紅細胞數。

3、用血紅蛋白(Hb)來換算紅細胞數：

取 10µL 抗凝全血加入 2.5mL 血紅蛋白測試液中，混

勻，靜置 10 分鐘，于 540nm，1cm 光徑，蒸餾水調零進

行比色。將測得的吸光度乘以 367.7 即為血紅蛋白的值。

以計數板計數的紅細胞的數值為橫坐標，以相應管的血紅

蛋白數為縱坐標，作標準曲線。您可以不做曲線，用附錄

Ⅲ的參考標準曲線圖一(鼠紅細胞數與血紅蛋白數的換算

曲線)。根據標準曲線查出紅細胞數。

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