實驗方法原理 本試劑盒采用*的兩相分離技術，結合DNA 制備膜選擇性地吸附DNA 的方法達到純化基因組DN的目的。適合從5 ml的抗凝人或哺乳動物全血，或500 μl 抗凝鳥類或兩棲動物全血中獲得多至250 μg 的基因組DNA。
實驗材料 抗凝全血
試劑、試劑盒 血基因組DNA大量試劑盒
儀器、耗材 DNA 制備管中量濾器連接管
實驗步驟
一、試劑盒組成、貯存、穩定性
1. 說明書，耗材：DNA 制備管、中量濾器、連接管。
2. Buffer VL：細胞和病毒裂解液，室溫密閉貯存。
3. Buffer G-B：蛋白沉淀液，室溫密閉貯存。
4. Buffer DV-A：Buffer DV 的制備液。請參照實驗準備Buffer DV 的配制方法配制，室溫密閉貯存。
5. Buffer DV：相分離液，室溫密閉貯存。
6. Buffer BV：DNA 結合液，室溫密閉貯存。
7. Buffer W1：洗滌液，室溫密閉貯存。
8. Buffer W2 concentrate：去鹽液。使用前，按試劑瓶上的體積加入無水乙醇，混合均勻，室溫密閉貯存。可用*乙醇或95%乙醇。
9. Eluent：2.5 mM Tris-HCl，pH 8.5，室溫密閉貯存。
二、實驗準備
1. *次使用時，在Buffer W2 concentrate 中按試劑瓶上的體積加入無水乙醇。
2. 準備無核酸和核酸酶污染的Tip 頭、離心管。
3. 制備Buffer DV：取4 ml Buffer DV-A 250 ml 異丙醇，150 ml 異丁醇，加入提供的500 ml 試劑瓶中，混合均勻。
4. 4℃預冷Buffer DV。
三、實驗步驟
【DNA 釋放 】
1. 將5 ml 抗凝全血置于一50 ml 離心管中，若全血樣本體積不足5 ml，用PBS 補充至5 ml。
2. 加入10 ml Buffer VL，蓋緊離心管帽，旋渦振蕩1 min。
3. 加入10 ml Buffer G-B，再次蓋緊離心管帽，立刻上下混勻。
【兩相分離去除蛋白和其它雜質】
4. 加入20 ml Buffer DV（4℃預冷），用力混合均勻?！? 000×g 離心5 min。
* 請在實驗前按照*頁準備Buffer DV。
5. 盡可能丟棄上相，保留相間沉淀和下相。加入20 ml 4℃預冷Buffer DV，用力混合，≥5 000×g離心5 min。
【基因組DNA 的純化】
6. 丟棄上相，將下相轉移至中量濾器中（濾器置于另一50 ml 離心管中），將活塞插入注射器，緩慢推動活塞，收集50 ml 離心管中的濾液。
* 上相必須*棄盡。
7. 棄濾器，在濾液中加入10 ml Buffer BV，混合均勻。
8. 將DNA 大量制備管插到負壓裝置的插口上，將步驟7 的混合液移到制備管中，開啟并調節負壓裝置至-20-30 英寸汞柱。
9. 待步驟8 管中液體都吸盡后，加入15 ml Buffer W1，吸盡管中液體，保持負壓。
10. 加入20 ml 已加入乙醇的Buffer W2，吸盡管中液體，關閉負壓裝置。
* 確認在Buffer W2 concentrate 中已按試劑瓶上的體積加入無水乙醇。
11. 將大量制備管從負壓裝置轉移至另一潔凈的50 ml 離心管中，≥6 000×g 離心5 min。
12. 將大量制備管插回到負壓裝置的插口上，保持負壓5 min，吸盡殘存的Buffer W2。
13. 將大量制備管置于另一潔凈的50 ml 離心管中，在silica 膜*加1.5 ml Eluent 或去離子水，室溫靜置5 min，≥6 000×g 離心5 min 洗脫DNA。
* 將去離子水或Eluent 加熱至65℃將提高洗脫效率。
14. 可選步驟：同樣方法，在silica 膜*加0.75 ml Eluent 或去離子水，室溫靜置1 min，≥6 000×g 離心5 min 洗脫DNA。
收起
注意事項
1. 下列操作步驟適合從5 ml 的抗凝人或哺乳動物全血，或500 μl 抗凝鳥類或兩棲動物全血中獲得多至250 μg 的基因組DNA。
2. Buffer VL，Buffer BV 和Buffer W1 含刺激性化合物，操作時要戴乳膠手套和眼鏡，避免沾染皮膚、眼睛和衣服，謹防吸入口鼻。若沾染皮膚、眼睛時，要立即用大量清水和生理鹽水沖洗，必要時尋求醫療咨詢。
3. 在按照此說明書操作前，請確保已做好足夠的對血傳播病毒的防護工作，按照正確方法處理體液和感染體。
4. 操作時嚴格按操作步驟進行，廢物必須放入含消毒液的廢物缸，并高壓滅菌。
