膜電位熒光探針DiSBAC2(5) 返回列表頁

操作步驟

1.準備細胞：

1.1對于貼壁細胞：在生長培養基中將細胞以40,000至80,000個細胞/孔/100μL在96孔板中培養過夜，或對于384孔板以10,000至20,000個細胞/孔/25μL。

1.2對于非粘附細胞：從培養基中離心細胞，然后將細胞沉淀懸浮于等量的HHBS和MP染料加載溶液（參見下面的步驟2.2），125,000至250,000細胞/孔/100μL，96-以及聚賴氨酸d板或30,000至60,000個細胞/孔/25μL的用于384孔聚賴氨酸d板。在實驗之前，在制動器關閉的情況下以800rpm 離心板2分鐘。

注意：每個細胞系應在個人基礎上進行評估，以確定佳的細胞密度為細胞內鈣動員。

2.準備DiSBAC2（3）染料加載溶液（1板）：

2.1在高質量無水DMSO中制備10至30 mM的DiSBAC2（3）原液。應及時使用原液; 任何剩余的溶液需要被等分并冷凍在< -20 ? C.

注意：避免反復凍融循環，避免光照。

2.2制備2X DiSBAC2（3）染料加載 溶液： 在實驗當天，將DiSBAC2（3） 固體溶解在DMSO中或將等分試樣的DiSBAC2（3）儲備溶液解凍至室溫。用0.04％的制備的在Hanks（HHBS）20至40μM和20mM Hepes緩沖液或者緩沖您的選擇，pH為7的2X工作溶液到0.08％的Pluronic ® F-127（目錄＃20053）和2mM 錐蟲紅Plus（Cat＃2456）。通過votexing很好地混合它們。該工作溶液在室溫下穩定至少2小時。

3.運行膜電位測定：

3.1將100μL/孔（96孔板）或25μL/孔（384孔板）DiSBAC2（3）染料加載溶液（來自步驟2.2）加入細胞板中。

注1：如果您的篩選化合物干擾g rowth培養基和血清因子，在添加DiSBAC2（3）染料加載 溶液之前，用等體積的HHBS緩沖液替換生長培養基?；蛘?，細胞可以在無血清條件下生長。

注2：染料加載后不要洗滌細胞。

3.2將染料加載板在細胞培養箱中孵育30至60分鐘。

注意：在病例中，在室溫下孵育30至60分鐘可能會更好。

3.3使用HHBS或所需的緩沖液制備復合板。

3.4通過監測Ex / Em = 540 / 590nm處的熒光強度（Cat＃21414）進行膜電位測定。

注意：在實驗之前運行信號測試很重要。不同的儀器有自己的強度范圍。將信號測試強度調整到大儀器強度計數的10％至15％的水平。例如，FLIPR-384的大熒光強度計數為65,000，因此應調整儀器設置以使其信號測試強度在7,000到10,000左右。