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青島中徠科技有限公司
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可拍攝25mm視野圖像的共聚焦顯微鏡，成像范圍幾乎兩倍于傳統的點掃描共聚焦。 在拍攝組織、器官以及整個生物體之類的大樣品時，需要成像系統具有更寬廣的探測范圍。
在拍攝組織、器官以及整個生物體之類的大樣品時，需要成像系統具有更寬廣的探測范圍以及更快的拍攝速度。A1 HD25/ A1R HD25共聚焦顯微鏡具有市面上的成像視野（25mm），使用戶能夠突破限制從而拓展研究范圍。
與Ti2-E倒置顯微鏡結合使用時，A1 HD25 / A1R HD25的成像區域幾乎是傳統18 mm視野的兩倍，使用戶可以在每一次拍攝中獲取更多的樣品數據。
全新的25mm視野
A1 HD25 / A1R HD25的25 mm視野大大減少了拼接大圖像所需的圖像數量以及拍圖時間。這使得即使是大型的樣品也能實現高效、高通量的成像。特別是對于大的3D（XYZ）圖像拼接，所需圖像的數量得以大大減少。
A1 HD25 / A1R HD25的25 mm視野：總共24幀
常規的18 mm視野：總共48幀
高速共振掃描頭和大視野的組合為高分辨率篩選分析提供了理想的平臺。它大大減少了分析多個樣品和條件所需的時間，而不會影響分辨率。
選擇96孔板中的孔
大視野可以幫助用戶拍攝整個孔（使用4倍物鏡）
大視野可以幫助用戶測量更大的區域，并進行超高通量分析。
1024 x 1024像素的圖像分辨率使得用戶可以在較低的放大倍率下采集高分辨率、高質量的圖像，提高了對各種樣品成像的兼容性。
大視野圖像和6X放大圖像（1024x1024像素）對比。樣品為經過RapiClear1.52透明化處理的H-line小鼠2mm腦片中的精細結構，由SunJin實驗室提供。 圖像來源：北海道大學電子科學研究所，Ryosuke Kawakami博士，Kohei Otomo博士以及Tomomi Nemoto博士。
高達720 fps的高速成像能力與大視野相結合，極大地提高了成像的吞吐量。該掃描方法可以減少樣品被激發光照射的時間，從而限度地減少光毒性和光漂白。
分別使用檢流計和共振掃描頭對熒光蛋白進行成像時的光漂白對比。使用檢流計掃描頭（2次平均）和共振掃描頭（64次平均）分別在15小時內每30分鐘拍攝表達LIFEACT-mCherry（F-肌動蛋白探針）的斑馬魚幼體的軀干血管系統的3D時間序列圖像。
1024 x 512像素，2倍變焦，Z軸拍攝100張
注意，使用共振掃描頭顯著抑制了LIFEACT-mCherry的光漂白。
圖片來源：日本醫學院高級醫學研究所分子病理生理學的Shinya Yuge博士和Shikuomo Fukuhara博士
帕內特細胞顆粒的分泌對于卡巴的響應。拍攝方式：高速4D實時成像（Z軸方向拍攝61張圖像，拍攝速度1.98s/體積，使用Piezo Z載物臺和1K共振掃描頭）。通過高清3D時間序列成像，用戶可清楚地觀察到單個帕內特細胞顆粒（綠色）分泌到腸內腔中。
綠色：Zinpyr-1（帕內特細胞顆粒），紫色：CellMask TM深紅（質膜）
激發波長：488 nm，638 nm。分辨率：1024×512像素。
圖像來源：北海道大學生命科學研究生院，高級生命科學系，細胞生物學系，先天免疫實驗室，Yuki Yokoi博士、Kiyori Nakamura博士、Tokiyoshi Ayabe博士
斑馬魚胚胎血管生成過程中的內皮細胞表達LIFEACT-mCherry（F-肌動蛋白探針）和MYR-GFP（質膜探針）的時間序列成像。從受精后22小時開始，使用共振掃描頭（64次平均），以2.5分鐘為間隔，拍攝時長14小時的3D時間序列圖像。
1024 x 1024像素，2倍變焦， 68張Z軸序列
在血管生成過程中內皮絲狀偽足的快速形成和回縮可以清楚地顯現。
圖像來源：日本醫學院高級醫學研究所，分子病理生理學系，Shinya Yuge博士和Shikuomo Fukuhara博士
不管是大尺度概覽圖像還是高倍率細節圖像，用戶都可以使用同一款顯微鏡完成拍攝。A1 HD25/A1R HD25的25mm 視野可有效幫助用戶觀察大樣本，而1Kx1K的高清拍攝則非常適合觀察細微結構。
狨猴大腦的拼接概覽大圖（使用CFI Plan Apochromat Lambda 10X物鏡拍攝）和樹突棘細節圖像（使用CFI SR HP Plan Apochromat Lambda S 100XC Sil物鏡拍攝）
A1-DUG-2探測器單元配備了4通道探測器，其中包含高靈敏度的GaAsP PMT。即使在熒光較弱或探測器單元與高速共振掃描頭一起使用時，也能以最小的背景噪聲采集到明亮的信號。
A1-DUVB-2配備高靈敏度GaAsP PMT，并支持使用檢流計和共振掃描頭進行光譜成像。該探測器單元的發射光譜探測范圍可調，能夠根據用戶定義的發射帶寬（最小10 nm）進行光譜成像?？勺儙Ｊ胶瓦B續帶通模式可根據應用進行選擇，并且可以對圖像進行光譜拆分。通過添加可選的第二個固定帶寬發射通道，可實現多通道同時成像。
CB（連續帶通）模式支持最多32通道光譜成像
VB（可變帶通）模式支持最多5色通道成像
五色熒光標記的Hela細胞，細胞核：DAPI，波形蛋白：Alexa Fluor® 488，核纖層蛋白：Alexa Fluor® 568，微管蛋白：Alexa Fluor® 594，肌動蛋白：Alexa Fluor® 633。樣品來源：久留米大學醫學院，皮膚病學系，辛島正志博士
A1-DUS能以至少2.5 nm的波長分辨率拍攝光譜圖像。用戶通過一次掃描即可獲得32通道熒光光譜（320 nm波長范圍），可實現高達24 fps（512 x 32像素）的快速成像。使用多達4個激光器同時激發可以使用戶在更寬的波段上進行光譜成像。
它可以精確地拆分緊密重疊的熒光標記光譜，同時可以消除自發熒光。圖像采集期間的實時拆分對于FRET分析非常有效。
五色熒光標記的HeLa細胞的光譜和拆分圖像
樣品來源：久留米大學醫學院，皮膚病學系，辛島正志博士
具有的虛擬濾光功能，可以實現無濾光片的光強調節。支持從32個通道中選擇任意光譜范圍，并可組合執行多達4個濾光片的濾光功能。能夠對每個熒光探針進行強度的成像。
尼康提供廣泛的高數值孔徑物鏡，具有的光學質量，重新定義了共聚焦成像的界限。選項包括用于厚活細胞成像的硅油浸液物鏡，大視野低放大倍率物鏡和易于使用的干鏡。色差由紫外到近紅外范圍校正，可實現出色的多色成像。
海馬體深處細節圖像，使用SunJin實驗室的RapiClear技術進行透明化處理，使用CFI Apochromat LWD Lambda S 20XC WI物鏡拍攝
Ti2-LAPP模塊化照明系統提供了一種新的光刺激模塊。其特點是可以對用戶自定義的感興趣區域進行點掃描刺激。用戶可以在對樣品進行光刺激的同時，進行A1 HD25/A1R HD的共聚焦成像。DMD模塊可同時刺激多個用戶自定義形狀感興趣區域。
NIS-Elements C是尼康的統一軟件平臺，能夠為共聚焦成像提供直觀的工作流程。借助圖形化的自動拍攝和分析編程工具，用戶可以針對任何級別的應用對操作環境進行完備的定制。
只需單擊即可生成更高分辨率的圖像。該軟件能夠對拍攝的圖像進行評估，自動確定圖像處理參數，以實現分辨率的提高。的圖像處理技術可將圖像分辨率提升至傳統共焦圖像的2.0倍（XY）和1.7倍（Z）。
圖片來源：東京大學醫學研究院和醫學院細胞神經生物學系， Yutaro Kashiwagi和Shigeo Okabe博士
采用分步式工作流程，能夠全自動地采集和分析大量高通量、多維度圖像。HCA支持快速實驗設計和采集過程中的逐孔即時測量數據顯示。數據還可以熱圖方式呈現，并可進行進一步分析。
用戶可以輕松創建復雜的、定制的實驗模板。從圖像拍攝到分析，用戶不需具有高級數據編程基礎。JOBS支持智能工作流程，將自動圖像拍攝與自動圖像和數據分析相結合。它可以提高實驗效率，減少數據采集、分析和挖掘所需的時間。
用于創建自定義分析流程的圖形編程工具。用戶可以輕松地按照界面進行交互的或自動的圖像分析，并輸出自定義結果。
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